تأثیر گیاه خارشتر و مان آن (ترنجبین) بر بیماریهای کلیه و مجاری ادراری: یک مرور نظاممند
مجله تاریخ پزشکی - علمی پژوهشی,
دوره 16 (1403),
7 اردیبهشت 2024
,
صفحه 1-12
https://doi.org/10.22037/mhj.v16i.39386
چکیده
زمینه و هدف: بیماریهای مزمن کلیوی امروز از هر ده نفر یک نفر را درگیر میکند. این بیماریها عموما برگشتناپذیر، پیشرونده و با خطرات بیشتر قلبی عروقی همراه است. یکی از گیاهان پرکاربرد در کاربرد عوام به منظور درمان بیماریهای کلیوی خارشتر و مان آن ترنجبین است که تاکنون هیچ مطالعه علمی مروری روی اثرات آن صورت نگرفته است. از این رو، مطالعه مروری نظاممند حاضر به منظور بررسی مروری اثر درمانی این مفردات گیاهی انجام شده است.
روش: برای جمعآوری اطلاعات تمام مطالعات خارشتر و نقش ترکیبات آنها در بیماریهای کلیوی و مکانیسم عمل آنها مورد بررسی قرار گرفت. کتابخانه Cochrane، Scopus، Web of Science، Embase، MEDLINE، Google Scholar و ProQuest با استفاده از واژگان کلیدی MeSH مرتبط و شرایط یکسان برای شناسایی مطالعات مربوطه با استفاده از اصول پریزما در مطالعات مروری جستجو شدند. با استفاده از این اطلاعات مطالعه تحلیلهای مرتبط صورت گرفت. طبق مطالعات مشخصشده گیاه خارشتر و ترنجبین دارای خاصیت مدر هستند و از اسپاسم کلیه جلوگیری میکنند.
ملاحظات اخلاقی: در پژوهش حاضر جنبههای اخلاقی مطالعه کتابخانهای شامل اصالت متون، صداقت و امانتداری رعایت شده است.
یافتهها: نتایج به دستآمده نشان داد، عصاره هیدروفیلیک ترنجبین غلظت اگزالات ادراری و تشکیل سنگ اگزالات کلسیم ادراری را کاهش میدهد و ترکیبات فلاونوئیدی این گیاه دارای اثرات آنتیاکسیدانی هست که مانع آسیب به سلولهای اپیتلیال کلیه میشود. همچنین مصرف گیاه خارشتر باعث کاهش کراتینین سرم و بهبود عملکرد کلیه میگردد. همچنین عصاره اتانولی ریشه ترنجبین دارای فعالیت اسپاسمولیتیک و آرامشبخش میزنای بوده و در تسکین درد ناشی از سنگ کلیه (انقباض میزنای) مؤثر است.
نتیجهگیری: بنابر یافته های این مطالعه میتوان از این مفردات برای بهبود عملکرد کلیه و همچنین درمان برخی بیماریهای کلیوی پس از انجام تحقیقات بالینی تکمیلی استفاده کرد.
- مرور نظاممند؛ ترنجبین؛ خارشتر؛ کلیه؛ دستگاه ادراری تناسلی
ارجاع به مقاله
مراجع
Ammirati AL. Chronic kidney disease. Revista da Associação Médica Brasileira. 2020; 66: s03-9.
Rafiei H, Malekpoor F, Amiri M, Rahimi Madiseh M, Lalegani H. Kidney stone development among older adults in Iran. Journal of the Indian Academy of Geriatrics. 2014;10.
Stamatelou KK, Francis ME, Jones CA, Nyberg Jr LM, Curhan GC. Time trends in reported prevalence of kidney stones in the United States: 1976-1994. Kidney International. 2003; 63(5): 1817-1823.
Hughes P. Kidney stones epidemiology. Nephrology. 2007; 12(1): S26.
Romero V, Akpinar H, Assimos DG. Kidney stones: A global picture of prevalence, incidence and associated risk factors. Reviews in Urology. 2010; 12(2-3): e86.
Segura JW, Patterson DE, Leroy AJ, Williams Jr HJ, Barrett DM, Benson Jr RC, et al. Percutaneous removal of kidney stones: Review of 1,000 cases. The Journal of Urology. 1985; 134(6): 1077-1081.
Diniz DH, Blay SL, Schor N. Anxiety and depression symptoms in recurrent painful renal lithiasis colic. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 2007;40: 949-955.
Bahmani M, Khaksarian M, Rafieian-Kopaei M, Abbasi N. Overview of the therapeutic effects of Origanum vulgare and Hypericum perforatum based on Iran’s ethnopharmacological documents. Journal of Clinical and Diagnostic Research. 2018; 12(7): FE01-FE04.
Abbasi N, Rafieian-Kopaei M, Karami N, Abbaszadeh S, Bahmani M. Medicinal Plants for Treatment Kidney Stones, An ethnobotany Study in Shahrekord. Egyptian Journal of Veterinary Sciences. 2019; 50(2): 145-149.
Mahmoudi GA, Mahmoodnia L, Mirhosseini M. A review on the most important medicinal herbs native to Iran with anti-acetaminophen toxicity. Journal of Global Pharma Technology. 2016; 8(11): 12-16.
Hajian S, Asgary S, Rafieian-Kopaei M, Sahebkar A, Goli-Malekabady N, Rashidi B. Hibiscus esculentus seed and mucilage beneficial effects in reducing complications of diabetes in streptozotocin-induced diabetic rats. Annals of Research in Antioxidants. 2016; 1(2): e23.
Hossan S, Agarwala B, Sarwar S, Karim M, Jahan R, Rahmatullah M. Traditional use of medicinal plants in Bangladesh to treat urinary tract infections and sexually transmitted diseases. Ethnobotany Research and Applications. 2010; 8: 061-074.
Babu PA, Suneetha G, Boddepalli R, Lakshmi VV, Rani TS, RamBabu Y, et al. A database of 389 medicinal plants for diabetes. Bioinformation. 2006; 1(4): 130-131.
Karimi M, Naghdi N, Naji-Haddadi S, Bahmani F. Medicinal plants used for kidney pain. Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. 2017; 9(5): 542-546.
Awaad AS, El-Meligy R, Qenawy S, Atta A, Soliman GA. Anti-inflammatory, antinociceptive and antipyretic effects of some desert plants. Journal of Saudi Chemical Society. 2011; 15(4): 367-373.
Hasheminasab FS, Sharififar F, Hashemi SM, Setayesh M. Ethnopharmacological knowledge for management of oral mucositis in Zahedan, Southeast Iran. Turkish Journal of Pharmaceutical Sciences. 2021; 18(2): 192-203.
Chakou FZ, Boual Z, Ould El Hadj MD, Badreddine A, Alaoui-Talibi E, El Modafar C, et al. Ethnobotanical utilization of Alhagi maurorum Medik. in traditional recipes of Algerian Sahara Illizi Wilaya. Euro-Mediterranean Journal for Environmental Integration. 2021 ;6(3): 1-8.
Alqasoumi SI. Isolation and chemical structure elucidation of hepatoprotective constituents from plants used in traditional medicine in Saudi Arabia. Riyadh: College of Pharmacy, King Saud University; 2007.
Alqasoumi SI, Al-Rehaily AJ, AlSheikh AM, Abdel-Kader MS. Evaluation of the hepatoprotective effect of Ephedra foliate, Alhagi maurorum, Capsella bursa-pastoris and Hibiscus sabdariffa against experimentally induced liver injury in rats. Natural Product Sciences. 2008; 14(2): 95-99.
AL-Jubory SY. Determination the lethal dose 50 (LD50) and study of acute toxicity and histopathological effects of glycosides extract of Alhagi maurorum (Aqual) in mice. University of Thi-Qar Journal of Science. 2013; 3(4): 26-33.
Zargari A. Medicinal. Tehran: Tehran University of Medical Sciences; 1997. [Persian]
Nabiyouni F, Vaezi G, Malekirad AA, Abdollahi M. The effects of ethanol extract of Alhagi camelorum on hepatic and renal functions in streptozotocin-induced diabetic rats. Experimental Animal Biology. 2016; 5(1): 31-38. [Persian]
Atta AH, Mouneir SM. Antidiarrhoeal activity of some Egyptian medicinal plant extracts. Journal of Ethnopharmacology. 2004; 92(2-3): 303-309.
Bonnefont-Rousselot D. The role of antioxidant micronutrients in the prevention of diabetic complications. Treatments in Endocrinology. 2004; 3(1): 41-52.
Ahmad MS, Ahmed N. Antiglycation properties of aged garlic extract: possible role in prevention of diabetic complications. The Journal of Nutrition. 2006; 136(3): 796S-9S.
Mohammadi H. Diuretic effect of Alhagi maurorum in Goat. Iranian Journal of Veterinary Medicine. 2008; 22(3).
Delfan B, Baharvand-Ahmadi B, Bahmani M, Mohseni N, Saki K, Rafieian-Kopaei M, et al. An ethnobotanical study of medicinal plants used in treatment of kidney stones and kidney pain in Lorestan province, Iran. Journal of Chemical and Pharmaceutical Sciences. 2015; 8(4): 693-699.
Mikaili P, Shayegh J, Asghari MH. Review on the indigenous use and ethnopharmacology of hot and cold natures of phytomedicines in the Iranian traditional medicine. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine. 2012; 2(2): S1189-S93.
Marashdah M, Al-Hazimi H. Pharmacological activity of ethanolic extract of Alhagi maurorum roots. Arabian Journal of Chemistry. 2010; 3(1): 39-42.
Asghari MH, Fallah M, Moloudizargari M, Mehdikhani F, Sepehrnia P, Moradi B. A systematic and mechanistic review on the phytopharmacological properties of Alhagi species. Ancient Science of Life. 2016; 36(2): 65-71.
El-Nabtity S, Abdllatief S, Al-Attar AS, Taha S. Antiurolithiatic effect of Cymbopogon Proximus, Alhagi Maurorum, on Sulfadimidine induced urolithiasis in male New Zealand rabbits. Mansoura Veterinary Medical Journal. 2019; 20(1): 14-21.
Bahmani M, Baharvand-Ahmadi B, Tajeddini P, Rafieian-Kopaei M, Naghdi N. Identification of medicinal plants for the treatment of kidney and urinary stones. Journal of Renal Injury Prevention. 2016; 5(3): 129-133.
Shafaeifar A, Mehrabi S, Malekzadeh J, Jannesar R, Sadeghi H, Vahdani R et al . Effect of Hydrophilic Extract of Alhagi Maurorum on Ethylene Glycol-Induced Renal Stone in Male Wistar Rats. Armaghan J. 2012; 17(2): 129-138. [Persian]
Cao Z, Liu J, Zhou S, Wu W, Yin C, Wu J. The effects of the active constituents of Alisma orientalis on renal stone formation and bikunin expression in rat urolithiasis model. Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 2004; 84(15): 1276-1279.
Bardaoui M, Sakly R, Neffati F, Najjar MF, El Hani A. Effect of vitamin A supplemented diet on calcium oxalate renal stone formation in rats. Experimental and Toxicologic Pathology. 2010; 62(5): 573-576.
Awaad Amani A, Maitland D, Soliman G. Antiulcerogenic activity of Alhagi maurorum. Pharmaceutical Biology. 2006; 44(4): 292-296.
Ahmed M, Tanbouly NE, Islam W, Sleem A, Senousy AE. Antiinflammatory flavonoids from Opuntia dillenii (Ker‐Gawl) Haw, flowers growing in Egypt. Phytotherapy Research: An International Journal Devoted to Pharmacological and Toxicological Evaluation of Natural Product Derivatives. 2005; 19(9): 807-809.
Xu J, Li X, Zhang P, Li ZL, Wang Y. Antiinflammatory constituents from the roots of Smilax bockii warb. Archives of Pharmacal Research. 2005; 28(4): 395-399.
Comalada M, Ballester I, Bailon E, Sierra S, Xaus J, Gálvez J, et al. Inhibition of pro-inflammatory markers in primary bone marrow-derived mouse macrophages by naturally occurring flavonoids: analysis of the structure-activity relationship. Biochemical Pharmacology. 2006; 72(8): 1010-1021.
Nair MP, Mahajan S, Reynolds JL, Aalinkeel R, Nair H, Schwartz SA, et al. The flavonoid quercetin inhibits proinflammatory cytokine (tumor necrosis factor alpha) gene expression in normal peripheral blood mononuclear cells via modulation of the NF-κβ system. Clinical and Vaccine Immunology. 2006; 13(3): 319-328.
Shafizadeh H. Medicinal plants of Lorestan. Haiian: Lorestan University of Medicine; 2002. p.142. [Persian]
Hirayama H, Wang Z, Nishi K, Ogawa A, Ishimatu T, Ueda S, et al. Effect of Desmodium styracifolium‐triterpenoidon Calcium Oxalate Renal Stones. British Journal of Urology. 1993; 71(2): 143-147.
Selvam R, Kalaiselvi P, Govindaraj A, Murugan VB, Kumar AS. Effect of A. lanata leaf extract and Vediuppu chunnam on the urinary risk factors of calcium oxalate urolithiasis during experimental hyperoxaluria. Pharmacological Research. 2001; 43(1): 89-93.
Yaghubian F, Cheraghi J, Mahmudi M. The effect of Alhagi maurorum (aerial parts) hydroachoholic extract on acute gentamicin nephrotoxicity in rat. Journal of Ilam University of Medical Sciences. 2014; 22(2): 73-81. [Persian]
Martinez-Salgado C, López-Hernández FJ, López-Novoa JM. Glomerular nephrotoxicity of aminoglycosides. Toxicology and Applied Pharmacology. 2007; 223(1): 86-98.
Silan C, Uzun Ö, Comunogˇlu NÜ, Gokçen S, Bedirhan S, Cengiz M. Gentamicin-induced nephrotoxicity in rats ameliorated and healing effects of resveratrol. Biological and Pharmaceutical Bulletin. 2007; 30(1): 79-83.
Yaman İ, Balikci E. Protective effects of Nigella sativa against gentamicin-induced nephrotoxicity in rats. Experimental and Toxicologic Pathology. 2010; 62(2): 183-190.
Kadkhodaee M, Khastar H, Faghihi M, Ghaznavi R, Zahmatkesh M. Effects of co‐supplementation of vitamins E and C on gentamicin‐induced nephrotoxicity in rat. Experimental Physiology. 2005; 90(4): 571-576.
Chiu PY, Leung HY, Poon MK, Ko KM. Chronic schisandrin B treatment improves mitochondrial antioxidant status and tissue heat shock protein production in various tissues of young adult and middle-aged rats. Biogerontology. 2006; 7(4): 199-210.
Zietse R, Zoutendijk R, Hoorn EJ. Fluid, electrolyte and acid-base disorders associated with antibiotic therapy. Nature Reviews Nephrology. 2009; 5(4): 193-202.
- چکیده مشاهده شده: 63 بار
- pdf دانلود شده: 44 بار